VALORACIÓN DEL ESTADO NUTRICIONAL: PARÁMETROS BIOQUÍMICOS, HEMATOLÓGICOS E INMUNOLÓGICOS

GENÓMICA Y ASMA

FISIOLOGÍA DE LA HEMOSTASIA. ENFERMEDAD TROMBOEMBÓLICA.

SISTEMAS DE OBTENCIÓN, TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS DESTINADAS A ESTUDIOS DE INMUNOFENOTIPO.

TIPAJE HLA EN TRASPLANTE DE PROGENITORES HEMATOPOYÉTICOS.

ESTUDIOS DE CLONALIDAD BASADOS EN LA INACTIVACIÓN DEL     CROMOSOMA X

I. El ADN. Características principales del ADN. Componentes del ADN. Estructura del ADN.
II. Metilación del ADN en humanos. Islas CpGs. Establecimiento de los patrones de metilación.
III. Estudios de clonalidad basados en el cromosoma X. Fundamentos del estudio.
IV. Reacción en cadena de la polimerasa PCR. Componentes necesarios en la PCR. Fases de la PCR.
V. Polimorfismos de longitud de fragmentos de restricción. RFLP (restriction fragment lenght polymorphism).

PREVENCIÓN DE RIESGOS LABORALES EN EL LABORATORIO CLINICO

I. LEGISLACIÓN SOBRE RIESGOS LABORALES. Definición de sistema de prevención de riesgos laborales. Normativa de prevención de riesgos laborales.
II. EDUCACIÓN Y FORMACIÓN EN SEGURIDAD E HIGIENE. El manual general de prevención. Propuesta de contenido básico. Política de prevención de riesgos laborales. Evaluación de riesgos. Control de riesgos. Actuaciones preventivas específicas. Información y formación de los trabajadores. Normas de seguridad. Control de la documentación y de los registros del sistema de prevención. Auditorías del sistema de prevención.
III. NORMAS DE SEGURIDAD EN UN LABORATORIO. Normas generales de conducta. Almacenamiento de productos químicos. Manipulacion de productos químicos. Equipos y material de laboratorio. Instrumental analítico. Operaciones básicas realizadas en el laboratorio. Instalaciones de gas. Instalaciones eléctricas. Eliminación de residuos. Actuaciones en caso de accidentes.
IV. TÉCNICAS CORRECTAS PARA EVITAR LA CONTAMINACIÓN DEL PERSONAL DE LABORATORIO. Equipos de protección individual y ropa de trabajo.
V. RESUMEN DE LA CUESTIONES BÁSICAS EN LA SEGURIDAD DE UN LABORATORIO: CONDICIONES DE TRABAJO. Enumeración de condiciones de trabajo que deben existir en el laboratorio clínico.
6. SEÑALIZACIÓN DE SEGURIDAD. Tipo de señalización necesaria en un laboratorio clínico.

PRACTICA DE LA TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA: BASES TEÓRICAS Y APLICACIÓN CLÍNICA

I. REACCIONES DE SENSIBILIZACIÓN AGLUTINACIÓN Y PRUEBA DE LA ANTIGLOBULINA HUMANA. Factores que influyen sobre la sensibilización de los hematíes. Factores que influyen sobre la aglutinación de los hematíes. La prueba de la antiglobulina (Test de Coombs). Utilidad de la prueba directa e indirecta de la inmunoglobulina. Falsos positivos y falsos negativos de la prueba de la antiglobulina.
II. PRUEBAS CRUZADAS. Determinación del grupo sanguíneo ABO (Grupo hemático. Grupo sérico.). Determinación del Rh. Determinación del DU. Pruebas de compatibilidad. La prueba cruzada y la investigación de anticuerpos irregulares. Discrepancias en el grupo ABO (Grupo hemático: Reacciones adicionales. Grupo hemático: Reacciones no producidas. Grupo sérico: Reacciones adicionales. Grupo sérico: Reacciones no producidas). Discrepancias en la determinación del Rh
III. COMPONENTES SANGUÍNEOS Y DERIVADOS DEL PLASMA. Componentes de la sangre (Concentrado de hematíes. Plaquetas. Componentes irradiados. Plasma fresco congelado. Crioprecipitado). Derivados plasmáticos (Albúmina humana. Inmunoglobulinas. Factores de la coagulación. Fibrinógeno).

TRATAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS EN EL LABORATORIO CLÍNICO.

I. Introducción
II. Normas generales de tratamiento de muestras de sangre.
III. Normas generales de tratamiento de muestras de orina.
IV. Normas generales de tratamiento de muestras de heces.
V. Normas generales de tratamiento de muestras de esputo.
VI. Normas generales de tratamiento de muestras de LCR.

IDENTIFICACIÓN DE CÉLULAS MADRE HEMATOPOYÉTICAS Y SU PROGENIE MEDIANTE TÉCNICAS INMUNOFENOTÍPICAS APLICADAS SOBRE MUESTRAS DE MÉDULA ÓSEA.

I. La Célula Madre o Célula Stem hematopoyética. Introducción. Definición de célula stem hematopoyética. Identificación de las células stem mediante marcadores celulares. Fuentes de células stem hematopoyéticas. Utilidad clínica. Plasticidad de las células stem.
II. La hematopoyesis en la Médula Ósea.
III. La Citometría de Flujo en el análisis de la hematopoyesis medular. La técnica de inmunofluorescencia directa. Fundamentos de la citometría de flujo. La separación celular selectiva por citometría de flujo: técnica de FACS (Fluorescente Activated Cell Sorting).
IV. La desregulación antigénica. Descripción general. El análisis por citometría de flujo. Ejemplos prácticos.

FISIOPATOLOGÍA DEL SISTEMA ERITROCITARIO

I. Introducción
II. Fisiología de la sangre y del hierro. Introducción. Metabolismo del hierro. Patologías del sistema eritrocitario: Alteraciones cuantitativas y cualitativas
III. Los síndromes anémicos: revision general.

ESTUDIO DEL LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO

I. Anatomía y Fisiología del liquido cefalorraquideo. Localización anatómica. Funciones. Composición. Utilidad clínica.
II. Obtención y procesamiento de la muestra. Obtención: punción lumbar. Procesamiento.
III. Análisis del liquido cefalorraquideo. Examen visual macroscópico. Estudio bioquímico. Glucosa. Proteínas. Enzimas. Marcadores turmorales. Estudio microbiológico. Estudio citológico.
IV. Diagnóstico de laboratorio.

BIOMATERIALES EN BIOMEDICINA. INTERACCIONES BIOLÓGICAS Y ENSAYOS PARA SU BIOCOMPATIBILIDAD

I. LOS BIOMATERIALES EN BIOMEDICINA. Definición. Tipos y aplicaciones. Implicaciones biopatológicas. Reglamentación y desarrollo.
II. BIOLOGÍA CELULAR Y BIOMATERIALES. Citotoxicidad y biomateriales. Necrosis, apoptosis y biomateriales. Ciclo, división, proliferación celular y biomateriales. Transformación celular y biomateriales. Adhesión celular y biomateriales.
III. LA BIOCOMPATIBILIDAD. LOS ENSAYOS DE BIOCOMPATIBILIDAD. Líneas celulares. Concepto y tipos de ensayos biológicos in vitro. Ensayos bioquímicos (Ensayo de MTT; Ensayo de LDHasa; Ensayo de Alamar Blue). Ensayos morfológicos (Microscopía óptica; Microscopía electrónica de barrido).

AISLAMIENTO, CARACTERIZACIÓN Y CULTIVO DE LINFOCITOS T HUMANOS

I. INTRODUCCIÓN. El receptor de la célula T y moléculas accesorias (Complejo TCR/CD3; Moléculas accesorias). Tipos de linfocitos T. Linfopoyesis T. Activación de la célula T.
II. CARACTERIZACIÓN INMUNOFENOTÍPICA DE CÉLULAS T.
III. AISLAMIENTO DE LINFOCITOS T.
IV. CULTIVO DE LINFOCITOS T Y ESTUDIOS FUNCIONALES. Proliferación (Ensayo de proliferación con timidina tritiada; MTT). Producción de citoquinas (ELISA; Estudio de citoquinas mediante citometría). Actividad citotóxica.

AISLAMIENTO, EXPANSIÓN Y CARACTERIZACIÓN DE CÉLULAS STEM MESENQUIMALES PROCEDENTES DE MÉDULA ÓSEA

I. INTRODUCCIÓN. Aproximación al concepto de célula stem adulta. Concepto de célula stem y tipos. Fuentes de células stem en el adulto. Opciones terapéuticas reales. Nuevas perspectivas.
II. MÉDULA ÓSEA COMO FUENTE DE CÉLULAS STEM. El nicho hematopoyético. Tipos celulares y aplicabilidad. El estroma o microambiente medular. Tipos celulares. Papel de las células stem mesenquimales.
III. METODOLOGÍA ESTÁNDAR EN CÉLULAS STEM MESENQUIMALES. Propiedades de las células stem mesenquimales. Técnicas de aislamiento y expansión. Controversia en torno a las células stem mesenquimales. Técnicas de caracterización. Aplicaciones de las CSM y nuevas perspectivas.

ANÁLISIS DE LÍQUIDOS AMNIOTICOS

1. INTRODUCCIÓN.
2. AMNIOCENTESIS. Concepto. ¿A quién se le da la opción de hacerse la amniocentesis? ¿Cuando se practica una amniocentesis? ¿Como se practica una amniocentesis? Cuando una amniocentesis produce resultados normales, ¿significa que el bebé será sano?
3. PREPARACIÓN DEL CARIOTIPO. Cultivos. Nomenclatura.
4. ANOMALIAS AUTOSOMICAS. Anomalías numéricas (poliploidía, monosomía, trisomía, no disyunción). Anomalías estructurales (translocaciones, deleciones, inversiones, cromosomas circulares).
5. ANOMALIAS DE LOS CROMOSOMAS SEXUALES. Anomalías numéricas (Síndrome de Klinerfelter, Síndrome de Turner, X múltiple, Varones XYY, Cromosoma X frágil).